T/CHATA 040-2024 结核病相关临床样本保藏规范
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- 标准类型：医药卫生
- 标准语言：中文版
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资料介绍
ICS 11.020
CCS C 05
团体标准
T/CHATA 040—2024结核病相关临床样本保藏规范
Storage specification for clinical specimen of tuberculosis
2024-08-19发布2024-08-19实施
中国防痨协会发布
目次
前言.................................................................................. IV
1 范围................................................................................. 1
2 规范性引用文件....................................................................... 1
3 术语和定义........................................................................... 2
4 保存及保藏原则.......... 4
4.1 保存原则....................................................................... 4
4.2 保藏原则....................................................................... 5
5 生物安全管理原则......................................................................5
6 人类遗传资源采集备案................................................................. 5
7 样本采集............................................................................. 5
7.1 基本要求........................................................................6
7.2 样本采集的时间................................................................. 6
7.3 温度........................................................................... 6
7.4 样本的采集程序................................................................. 6
8 样本运输............................................................................. 6
8.1 运输原则....................................................................... 6
8.2 申请........................................................................... 6
8.3 包装........................................................................... 7
8.4 运输........................................................................... 8
9 样本验收与登记....................................................................... 8
9.1 信息记录....................................................................... 8
9.2 样本标识....................................................................... 9
10 样本实验室处理和保存/保藏........................................................... 9
10.1 血清或血浆样本................................................................ 9
10.2 外周血单个核细胞样本......................................................... 10
10.3 细胞冻存................................................... 错误！未定义书签。11
10.4 痰样本....................................................................... 11
10.5 尿液样本..................................................................... 12
10.6 体液样本（如胸水、腹水、脑脊液和脓液等） ..................................... 12
10.7 消化道样本................................................................... 13
10.8 分枝杆菌的收集和保存......................................................... 13
10.9 组织样本..................................................................... 13
11 样本分装........................................................................... 14
12 存储样本的质量控制..................................................................14
12.1 固体组织样本................................................................. 14
12.2 组织切片..................................................................... 15
12.3 液体样本..................................................................... 15
12.4 细胞样本..................................................................... 15
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III
12.5 微生物样本................................................... 错误！未定义书签。
12.6 生物分子样本................................................................. 15
13 废弃样本的处理......................................................................15
13.1 基本原则..................................................................... 15
13.2 处置要求..................................................................... 16
附录A （规范性）临床标本采集的标准工作程序............................................17
附录B （资料性）试剂耗材..............................................................22
附录C （资料性）设备..................................................................24
附录D （资料性）临床常分离的非结核分枝杆菌菌种的培养条件..............................25
参考文献.............................................................................. 28
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IV
前言
本文件按照GB/T 1.1—2020《标准化工作导则第1部分：标准化文件的结构和起草规
则》的规定起草。
请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。
本文件由首都医科大学附属北京胸科医院、中国疾病预防控制中心共同提出。
本文件由中国防痨协会归口。
本文件起草单位：首都医科大学附属北京胸科医院、中国疾病预防控制中心、首都医
科大学附属北京儿童医院、中国人民解放军总医院第八医学中心、上海肺科医院、上海市
疾病预防控制中心、天津市海河医院、湖南省胸科医院、福州肺科医院、河南省胸科医院、
武汉肺科医院、河北省胸科医院、遵义医学院附属医院。
本文件主要起草人：黄海荣、赵雁林、姜广路、张宗德、孙照刚、夏辉、王桂荣、霍
凤敏、于霞、陈素婷、申阿东、吴雪琼、余方友、沈鑫、张丽霞、谭云洪、黄明翔、王伟、
刘冠、车南颖、郑立恒、宗兆婧。
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1
结核病相关临床样本保藏规范
1 范围
本文件规定了结核病临床生物样本保藏的相关设备、设施及环境的要求，以及样本采集、
处理、贮存及管理的相关要求。
本文件适用于开展结核病生物样本保藏和保存的各级各类医疗卫生机构和科研机构。
2 规范性引用文件
下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日期的
引用文件，仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有
的修改单）适用于本文件。
GB 19489—2008 实验室生物安全通用要求
GB/T 37864-2019 )生物样本库质量和能力通用要求
HJ 628-2011 生物遗传资源采集技术规范（试行）
GB 50346-2012 实验室建筑技术规范
GB 19489-2008 实验室生物安全通用要求
CNAS-CL05-2009 实验室生物安全认可准则
GB/T 27025-2008 检测和校准实验室能力的通用要求
GB/T 18883-2002 室内空气质量标准
MH/T 1019-2005 民用航空危险品运输文件
GB/T 5458-2012 液氮生物容器
WS/T 224-2002 真空采血管及其添加剂
GB/T 20269-2006 信息安全技术信息系统安全管理要求
GB/T 1.1-2009 标准化工作导则第1 部分：标准的结构和编写
GB/T 12905-2000 条码术语
GB/T 17172-1997 四一七条码GB/T 18347-2001 128 条码
3 术语和定义
下列术语和定义适用于本文件。
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2
3.1
临床样本clinical specimen
从人体获得或衍生的任意临床检测物质。[来源：ISO 20387：2018，3.7]
3.2
临床生物样本库clinical specimen bio-bank
经标准化采集、处理、贮存和应用的健康和疾病生物体的生物大分子、细胞、组织和器官
等样本[包括人体器官组织、全血、血浆、血清、生物体液或经处理过的生物样本（DNA、RNA、
蛋白等）]，以及与这些生物样本相关的临床、病理、治疗、随访、知情同意等资料及其质量
控制、信息管理与应用系统。
3.3
捐赠者donor
按照法律规定、医学标准和程序提供生物样本的人或尸体。
注：有的国家用“受试者”或“个体”来表示捐赠者，尤其是在涉及人体样本时。
3.4
知情同意informed consent
有完全行为能力的个人或无完全行为能力个人的法定监护人获知必要信息并充分理解其内
容，经充分考虑后做出参与研究的决定，此决定不受恐吓、利诱或其他不当行为的影响。
3.5
知情同意书written consent
捐赠者或其法定监护人表示自愿捐赠个体生物样本而签署的文件。
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3
3.6
泛知情同意broad consent
知情同意的特殊形式，大多数基于生物样本库的研究其目的在样本采集当下并不能被明确，
因此，生物样本库采用特有的知情同意模式。
注：泛知情同意的特点表现为: 以该类研究对受试者的低风险性为基础，研究者对医疗数据和生物样本应
用于将来可能的研究履行“告知责任”。泛知情同意签署的目的是提升医疗数据和生物样本应用于将
来研究中的“效用”。
3.7
采集collection
已经明确研究目的而经过特别方法获取的一个或多个样本。
3.8
分装aliquot
将样本分成几份并贮存到单个容器中的过程。
注：分装后的样本即成为独立的样本个体。“分装”一词也作为名词，用来表示一个样本。
3.9
保存storage
在样本处理和贮存过程中，通过使用化学试剂、改变环境条件或者其他手段来防止或延缓
样本生物或物理性能的退化。
3.10
保藏preserve
将来源合法的人类遗传资源保存在适宜环境条件下，保证其质量和安全，用于未来科学研
究的行为，不包括实验室检测后按照法律、法规要求或临床研究方案约定的临时存储行为。
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4
3.11
标签label
任何写在、印在或贴在样本容器或包装上的手写、印刷的文字、图形或材料。
3.12
标识符labelled information
识别信息recognizable information
可以识别主体的信息，例如姓名、社保号码、医疗记录或病理号码等。
注：对于某些样本，识别信息包括分类学上的名称和收集时的编号。
3.13
匿名anonymous
不收集与样本相关的可识别的个体信息，或是收集的相关数据被隐藏而不能检索，以保证
无法追踪到样本来源。
3.14
容器container
用来放置一个或多个样本的贮存器。
3.15
灭菌sterilized
采用强烈的理化因素使任何物体内外部的一切微生物永远丧失其生长繁殖能力的措施。
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5
3.16
生物危险bio-hazard
因生物因子导致的直接或潜在的危险。
4 保存及保藏的要求和原则
4.1 保存要求和原则
4.1.1 避免因物品、容器、设备的堆积堆放形成消防安全隐患。
4.1.2 宜尽可能使用相对稳定简单易行的保存处理方法，避免保存条件波动，造成保存对象
性状出现较大变化。如果使用要求条件较高的保存方法，宜有相应的场所、电力配套条件。
4.2 保藏要求和原则
4.2.1 在生物样本保藏之前，应按照要求向中华人民共和国科学技术部提交人类遗传资源采集
审批并得到批准。
4.2.2 进行任何临床标本采集都应取得捐赠者的知情同意书。特定情形需要豁免时，应由伦
理委员会根据适当的法律及法规规定审核批准。
4.2.3 临床生物样本应对样本和数据均进行匿名化处理，除非经伦理审查委员会批准样本使
用者可访问捐赠者的身份信息，否则捐赠者的身份信息应在样本提供给使用者之前删除。
4.2.4 临床生物样本和相关数据的采集、贮存和使用应建立在对个体的尊重、隐私的保护和
保密的基础上。样本的国际共享需遵循涉及国家的法律和政策。
5 生物安全管理原则
5.1 确保所开展操作的生物安全风险等级与实验室生物安全等级相匹配。
5.2 生物样本的操作均要符合与结核病相关的生物安全操作规范。
5.3 建立生物安全保障制度，注重对所有相关人员开展生物安全培训。
5.4 建立生物安全风险评估体系，随时监测和分析生物安全隐患并采取防护措施。
6 人类遗传资源采集备案
根据《中华人民共和国行政许可法》和《中华人民共和国人类遗传资源管理条例》的规定，
凡在中国境内开展中国人类遗传资源活动前， 均需要在中华人民共和国科学技术部
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6
（https://www.most.gov.cn/index.html）网站提交采集保藏审批申请，获得批准后方可开展
相关活动。
7 样本采集
7.1 基本要求
7.1.1 样本的采集和处理应有专属场地，不应场地兼作办公使用。
7.1.2 采集人员应经过职业道德规范、意外情况应急处理、生物安全知识和伦理规范的培训、
考核，切实保护被捐赠者的隐私，严格遵守临床生物样本库的各项规章制度。
7.1.3 样本的捐赠应经由捐赠者知情同意，每份样本都有对应的知情同意书或泛知情同意书。
7.2 样本采集的时间
根据不同的研究应用目的，标本采集和处理的时间节点有所不同。当标本处于缺血或离体
状态时，应尽快贮存于低温环境下。需对采集、处理、贮存、运输过程进行记录。
7.3 温度
标本采集后至运送前时间和温度的控制极其重要，应根据标本采集类型和后续开展研究内
容决定样本采集、处理和贮存的适宜温度。采集和处理时间应记录在案，并提供给最终用户。
7.4 样本的采集程序
临床标本的采集标准流程，见附录A。
8 样本运输
8.1 原则
结核分枝杆菌属于《人间传染的病原微生物目录》中第二类高致病病原微生物，其相关的
生物样本的运输包装分类为A类的病原微生物菌（毒）种或样本。对于疑似高致病性病原微生
物菌（毒）种或样本，其申请、包装和运输原则见《可感染人类的高致病性病原微生物菌（毒）
种或样本运输管理规定》。新鲜标本采用常温或冷藏运输，冷藏运输的介质多为冰袋，一般用
于医院内、短时间或近距离运输。
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7
8.2 申请
8.2.1 申请文件
从事疾病预防控制、医疗、教学、科研、菌（毒）种保藏以及生物制品生产的单位，因工
作需要，可申请运输高致病性病原微生物菌（毒）种或样本。申请运输高致病性病原微生物菌
（毒）种或样本的单位（以下简称申请单位），在运输前首先向相关卫生行政管理机构提出申
请，并提交以下7类申请材料：
a）运输事由（例如合作开展科研项目的证明）等要求提供的材料；
b）容器或包装材料的批准文号、合格证书（复印件）或者高致病性病原微生物菌（毒）
种或样本运输容器或包装材料承诺书；
c）接收高致病性病原微生物菌（毒）种或样本的单位(以下简称接收单位)取得有关政府
主管部门核发的从事高致病性病原微生物实验活动、菌（毒）种或样本保藏、生物制品生产等
的批准文件；
d)接收单位具备从事高致病性病原微生物实验活动资格的实验室证明；
e)接收单位同意接收的证明文件；
f)申请单位和接收单位的法人资格证明材料（复印件）；
g)可感染人类的高致病性病原微生物菌（毒）种或样本运输申请表。
8.2.2 批准单位
申请在省级行政区域内运输的，由省级卫生健康管理部门审批，符合要求的申请，由省级
卫生健康管理部门颁发“可感染人类的高致病性病原微生物菌（毒）种或样本准运证书”。申
请跨省运输的，先由省级卫生健康管理部门进行初审，符合要求的上报国家卫生健康管理部门
进行审批，并获得相关准运证书。
8.3 包装
运输结核分枝杆菌菌株或可能含结核分枝杆菌样本的容器或包装材料应达到国际民航组织
《危险物品航空安全运输技术细则》（Doc9284号文件包装说明PI602）规定的A类包装标准，
符合防水、防破损、防外泄、耐高温、耐高压的要求，并应印有国家卫生健康委员会规定的生
物危险标签、标识、运输登记表、警告用语和提示用语。符合UN2814要求的包装可运输菌株和
样本，符合UN3373要求的包装只能运输样本。
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8.4 运输
经陆路运输高致病性病原微生物菌（毒）种或样本，至少2人护送。申请单位应对护送人
员进行相关的生物安全知识培训。需航空运输时，申请单位应凭省级以上卫生健康管理部门或
中国疾病预防控制中心核发的“可感染人类的高致病性病原微生物菌（毒）种或样本准运证书”
到民航等相关部门办理手续。通过民航运输的，托运人应按照《中国民用航空危险品运输管理
规定》（CCAR276）和国际民航组织文件《危险物品航空安全运输技术细则》(Doc9284号文件)
的要求，正确进行分类、包装、加标记、贴标签并提交正确填写的危险品航空运输文件，交由
民用航空主管部门批准的航空承运人和机场实施运输。如需由未经批准的航空承运人和机场实
施运输的，应经民用航空主管部门批准。
9.样本验收与登记
9.1 信息记录
样本发出人员、接收人员应做好样本交接的记录工作。记录内容包括但不限于：样本发送
时间、样本清单、发送人、接收人、接收时间、运送条件、不合格样本情况及处置信息。
9.2 标本验收
标本送达实验室后按要求进行验收，验收内容包括但不限于：
a) 容器外观及信息核对：容器有无破裂;样本标号是否清楚、与纸版记录（或电子记录）
是否相符；
b) 验收样本数量与所填写数量是否一致；
c) 检查样本的量及性状：外观质量有无溶血、血清有无乳糜、抗凝血中有无血块；
d) 样本采集及送达之间的时间间隔，必要时查验样本是否新鲜及了解样本采集后的保存
方法。
9.3 不合格标本处理
对于不合格标本，如空管、抗凝血凝固、严重溶血、采集管破裂、脂血样本，签收人有权
拒收，同时注明拒收原因。
对不合格但可以接受的样本，如样本量过少等，签收人记录样本缺陷，及时与相关人员沟
通，以尽可能重新采集样本。
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9.4 样本标识
样本标识采用标签标记，宜采用二维条形码或一维条形码。贮存生物样品的每个容器应有
唯一的、清晰明确的识别符号，能够牢固附着在容器上，并能耐受低温贮存的条件。所有的相
关信息能够与此唯一标识符相关联。
样本验收合格后，根据研究需求，生成、打印样本标签（与分装的样本类型、数量对应），
并将标签贴到拟存放分装样本的容器表面。
10 样本实验室处理和保存/保藏
10.1 试剂耗材和设备
试剂耗材见附录B，设备见附录C。
10.2 血清或血浆样本
10.2.1 处理方法与保存
处理方法与保存方法如下。
a）真空采血管应一直保持封闭垂直位置直到离心取出血清或血浆，防止震荡过于剧烈造
成溶血。
b）血清（非抗凝血）或血浆（抗凝血）：采血后抗凝血标本需颠倒混合5 次～10 次，非
抗凝血室温静置15min～30min 后可自行完全凝固。离心2000r/min，10min 后分离血清或血浆
至冻存管，每份标本适量分装。
c）标本冻存管按顺序放置于冻存盒中，置于低温冰箱保存（温度依据后续研究用途选
定）。
10.2.2 注意事项
注意事项如下：
a）血清中不能混有血丝、纤维丝；
b）取到标本后尽快在短时间内处理；
c）后续开展RNA 相关研究的样本应存入-80℃冰箱，避免反复冻融，用于其他用途可酌情
放置于-20℃或-40℃或其他温度的冰箱保存。
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10.3 外周血单个核细胞（peripheral blood mononuclear cell, PBMC) 样本
10.3.1 处理方法与保存
处理方法与保存方法如下。
a）依据所获得抗凝全血量取15mL 或50mL 离心管(10mL 全血可用15mL 离心管，10mL 以上
全血可用多支15mL 离心管或50mL 离心管)，向管内加入淋巴细胞分离液，与全血的比例为
1:2。
b）将已加入淋巴细胞分离液的离心管与桌面呈45°夹角, 将混合均匀的抗凝全血用滴管
沿管壁缓慢叠加于分层液面上，注意保持清晰的界面。2000r/min 水平离心20min。
注:离心机不能骤停，一定要关掉面板上的BRAKE 键。
c）小心取出离心管，离心后管内分为三层：上层为血浆，下层主要为红细胞和粒细胞，
中层为淋巴细胞分离液。在上、中层界面处有一以单个核细胞为主的白色云雾层狭窄带。单个
核细胞包括淋巴细胞和单核细胞，还含有血小板。
d）用吸管小心吸取最上层的血浆，分装保存。在液面距云雾层1cm 处停止吸取，注意不
要干扰云雾状的PBMC 层。
e）用毛细管插到云雾层，吸取单个核细胞层液体。置入另一灭菌的离心管中，加入5 倍
以上体积的RPMI-1640 培养基，1500r/min 离心10min，弃去上清，可见管底部乳白色的细胞
团。将细胞团轻柔吹打，再次加入10mL RPMI1640，1500r/min 离心10min 洗涤细胞。
f）末次离心后，弃上清。弹起管底细胞团，加入含有10％胎牛血清的RPMI1640，重悬细
胞。取10μL 细胞悬液与10μL 的0.2%台盼兰染液混合，于血球计数板上计数4 个大方格内
的细胞总数，或使用细胞计数仪计量细胞总数。
g）细胞活力检测：台盼兰染色后，死细胞可被染成蓝色，活细胞不着色。计数200 个淋
巴细胞。计算出活细胞百分率。
活细胞数
活细胞百分率＝ ×100%
总细胞数
h）预期收获：用本法分离PBMC，健康人每毫升外周血可分离得到大约（1～2）×106
PBMC，纯度在90％以上，收获率可达80％～90％，活细胞百分率＞95％。
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10.3.2 注意事项
注意事项如下。
a）抽取人外周静脉血时要注意无菌操作，与抗凝剂充分混合。
b）操作全程应尽可能在采血后6h 内完成，以免增加死细胞数。
c）用淋巴细胞分离液分离PBMC 时，离心机转速的增加和减少要均匀、平稳，以便保持清
晰的界面。
d）为减轻标本中红细胞浓度过高引起的聚集，改善分离效果，可用培养液对标本进行稀
释。
e）分离液与培养液在实验前恢复至室温。最佳温度为18℃～20℃。温度低可能影响分离
效果，而当温度过高，细胞的活力受到影响，容易导致红细胞聚集而影响分离。
10.4 细胞冻存
10.4.1 处理方法与保存
处理方法与保存方法如下。
a）配制细胞冻存液（含10% DMSO或甘油的胎牛血清）：DMSO与胎牛血清1∶9配制，混匀，
4℃冰箱预冷备用。
b）将梯度降温盒放置于4℃冰箱预冷备用。
c）将分离获得的PBMC加入适量配制好的冻存培养液，用吸管轻轻吹打混匀。冻存细胞终
密度宜为5×106/mL。
注：尽量减少吹打次数,以免DMSO放热损伤细胞。
d）将细胞适量分装入冻存管中。
e）将冻存管放入梯度降温盒中，放入-80℃冰箱，过夜。
f）取出冻存管，移入液氮容器内。标记位置。
g）冻存有效时间：细胞贮存在-80℃中可保存一年；细胞贮存在液氮中(-196℃)，理论上
贮存时间可为无限长。
10.4.2 注意事项
注意事项如下。
a）在冻存细胞时细胞冻存液要经过预冷，避免DMSO放热对细胞造成损伤。
b）冻存过程中温度的缓慢下降是细胞活性的良好保障。宜使用梯度降温盒，以保证细胞
温度有规律地缓慢下降，避免快速降温导致的细胞温度不均。
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10.5 痰样本
10.5.1 处理方法与保存
处理方法与保存方法如下。
a）制备0.1% 二硫苏糖醇（DTT）贮存液：
1）取10 mg DTT溶解于10mL的PBS中（无菌，细胞级，pH 7.4±0.2）；
2）经0.22μm滤膜的滤器过滤除菌，制备1mL等分试样；
3）混合均匀，在容量瓶上标注试剂名称、配置浓度、制备日期和到期日期。
b）使用DTT处理痰液标本的程序：
1）准备并使用合适的标本条形码标签标示冷冻管；
2）确定加入痰液标本的DTT工作液体积，得到最终浓度为0.01% DTT；
3）DTT溶液和痰液标本均必须处于室温下，以便有效地进行消化过程；
4）漩涡振荡标本20s；
5）将标本放置于平台振荡器上，以60 r/min的速度机械震荡20min；
6）使用无菌移液管，向每个预先标识的2mL冷冻管中转移1mL经DTT均质化处理后的痰液，
制备等分样本；
7）盖紧瓶盖并密封每个冷冻管；
8）在-80℃下贮存痰液等分样本。
10.5.2 注意事项
贮存液（0.1% DTT）应立即使用，否则在2℃~8℃下最长可贮存48h。
10.6 尿液样本
10.6.1 处理方法与保存
处理方法与保存方法如下。
a）尿液标本应贮存在15mL离心管的冷冻保存盒中。
b）使用合适的条形码标签标识冷冻管。
c）分装之前充分混匀尿液，每40mL尿液中加入1mL TE 缓冲液（0.5M 乙二胺四乙酸
(EDTA)，0.5M Tris-HCL, pH 8.5)。
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d）使用无菌移液管，在每一个冷冻管中分装10mL，拧紧盖子，冻存。
e）确认每一个冷冻管均贴有合适的预先打印的条形码标签。
f）将冷冻保存盒放置于-80℃冷冻冰箱中保存。
10.6.2 注意事项
冻存需使用耐低温冻存盒。不宜使用泡沫制盒子，其在低温冷冻状态下易被挤压开裂。
10.7 体液样本（如胸水、腹水、脑脊液、支气管肺泡灌洗液和脓液等）
处理方法与保存方法如下:
a）在生物安全柜中分装体液样本，每管1.5mL；
b）盖紧瓶盖并密封每个冷冻管；
c）在-80℃下贮存体液等分样本。
10.8 消化道样本
将新鲜样本置于不透水的贮存容器内，直接冷冻保存或分装后冷冻保存。新鲜胃液标本需
要先进行中和后再冷冻保存，或分装后冷冻保存。
10.9 分枝杆菌的收集和保存
本文件规定的分枝杆菌包括结核分枝杆菌复合群（Mycobacterium tuberculosis complex，
MTBC）和非结核分枝杆菌。不同的分枝杆菌菌种有类似的操作规范，但结核分枝杆菌复合群与
非结核分枝杆菌的操作在生物安全防护级别存在差异。此外，少数非结核分枝杆菌菌种需要特
定的培养基、特定的培养温度（见附录D）。以下方案以结核分枝杆菌为例，适用于多数非结
核分枝杆菌。
a）固态培养基生长的结核分枝杆菌：
1）选取在固体培养基上生长良好的新鲜菌落（生长周期不超过2 个月，初生长2 周~3
周内的菌株状态最佳）；
2）于生物安全柜中，用刮菌环轻轻刮取培养基斜面上的菌落；
3）置于含有适量5%的Tween80 的磨菌瓶中，涡旋振荡后静止15min。
4）加入含20%甘油的7H9 培养液混匀成菌悬液,吸取菌悬液置于冻存管中；
5）放置于-80℃冷冻冰箱保存。
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b）液体培养基生长的结核分枝杆菌：
1）选取近期（报告阳性不超过2 个月）液体培养报告阳性且初步鉴定为目标菌种的培养
管。
2）离心（12000r/min，5min）后，于生物安全柜中收集细菌。
3）将菌落分散于含灭菌5mL Middlebrook 7H9 培养基（含甘油至终浓度为20%）的试管
中，小心上下吸打使菌液混合均匀。
4）每管1mL 分装后立即贮存在-80℃冰箱。
10.10 组织样本
处理方法与保存方法如下。
a）组织标本由医生在术中切除获得。将切除后的新鲜组织样本放入灭菌容器内。
b）密封灭菌容器，确保样本无菌。
c）将装有组织样本的灭菌容器放入组织样本标本袋内，并在袋上标记捐赠者姓名、病案
号。将标本袋放入样本转运箱，交给样本转运人员。
d）样本转运人员将组织样本在15min～30min 内转运至样本接收室。
e）对接收的样本进行核对和检查，对捐赠者姓名、科室、住院号及标本部位核对和确认
无误后，接收样本。
f）实验员在生物安全柜内对样本进行取材。
g）将样本放入到相应的组织清洗液离心管内反复清洗3 次。
h）转移到已加入组织保存液的离心管中，做好标记。
i）转移至冻存管中低温冻存，或直接用于组织细胞的后续分离培养等工作。
11 样本分装
分装处理样本的实验室应符合GB 19489—2008 中生物安全实验室的要求。样本处理时应
合理地分配有限的样本，并尽量保持样本原有的形态。每份完整或分装处理的样本都应分配条
形码编号。
样本分装要求如下：
a）应按原始样本的性质，控制原始样本从采集离体到开始处理的时间；
b）完成处理的样本在贮存前应选择适宜的分装量进行分装，满足使用要求的同时避免对
生物样本的反复冻融；
c）在处理前对样本进行必要的检测，以确定采集的样本是否满足要求及明确样本的一些
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特性和质量数据；
d）对所有处理过程中和处理完成准备贮存和使用的样本进行唯一性标识处理，确保其能
追溯到采集的原始样本。
12 存储样本的质量控制
12.1 通则
为保证贮存样本的质量，应定期随机抽检一定数量的样本，开展样本适宜的检测，以了解
保藏样本的质量。通过抽检的方式反映同期同一类型标本的质量随保存时间延长的变化。目前
还缺乏公认的样本抽取数量和抽查周期的标准。可根据保藏标本的数量、标本来源的珍贵性、
未来开展检测的目的等设置符合自身情况的抽检标本方案。可采用固定抽取比例或是固定抽取
数量的抽查方案。
12.2 固体组织样本
固体组织样本应符合研究方案的需求，其质量控制应由病理学专业技术人员、细胞生物学
专业技术人员，或是经过培训的专业技术人员完成。通过对样本的显微镜检查和对核酸以及蛋
白质等特殊分子的检测进行质量控制。
12.3 组织切片
组织切片通过对肉芽肿百分比、干酪样坏死百分比、细胞结构和其他形态特征的检测来进
行质量控制。由病理学专业技术人员、细胞生物学专业技术人员，或是经过培训的专业人员完
成。
12.4 液体样本
对于液体样本如血清、血浆、尿液、脑脊液等，对其中的特定物质实施检测以进行质量控
制。用分子标志物来评估样本质量，如用血红蛋白来评估溶血情况。如需进行某一特定细胞因
子的检测，则新采集的样本也应参考冻存样本中该细胞因子水平进行质量控制。
12.5 细胞样本
对于培养基中生长的细胞或细胞系，主要控制细菌、真菌和病毒的污染。根据复苏后细胞
活力或细胞悬浮液的密度进行细胞样本的评估。
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12.6 微生物样本
微生物样本通过其表型特征和功能分析等进行质量控制。对于微生物样本分类学鉴定，通
过核酸序列分析或经典的生化试验等实现。将特定的微生物置于特定的培养基或特定的培养环
境中培养，防止杂菌污染。
12.7 生物分子样本
生物分子如核酸样本和蛋白质样本，通过凝胶电泳等检测DNA、RNA和蛋白质的完整性来进
行质量控制。
13 废弃样本的处理
13.1 基本要求
临床生物样本库存在生物安全风险的废弃物的处理和处置应符合国家或地方的法律和标准
的要求：
a）将操作、收集、运输、处理和处置废弃物的危险降至最小；
b）将其对环境的破坏降至最小；
c）只使用规定的或者被认可的技术和方法处理和处置废弃物；
d）废液排放应符合国家或地方的法律规定和标准；
e）应有废弃物处理和处置的程序和操作规程，具备处置危险废弃物的能力和资质；
f）应评估和避免废弃物处理和处置本身的风险；
g）应根据废弃物的性质和危险性分类处理和处置。
13.2 处置要求
处置要求如下。
a）样本和所有危险废弃物都应装入适当的容器，锐器应置于锐器盒中。
b）所有尖锐废弃物应放入贴有生物危害标签的抗刺穿容器中，针头等尖锐废弃物不能重
复使用。
c）所有贮存化学废弃物的容器应能完全封闭且不易被损坏，根据内容物不同选择能耐受
不同贮存条件的容器。对于某些化学废弃物，不宜使用软木塞或橡胶塞。
d）标签上应提供废弃物信息，包括废弃物成分的通用名称、每种成分的大概百分比。不
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能使用缩写或商品名，不使用模糊的种类。
e）液体废弃物容器只允许装满70%～80%的总容量，以允许蒸汽膨胀，减少满载时溅出的
可能。废弃物的处理可使用高温高压灭菌或者加入化学消毒剂。宜避免处理时产生气溶胶或液
体溅出。
f）危险化学废弃物不能和一般垃圾混在一起处理。需要特殊处理的有机过氧化物，应与
其他废弃物分开处理。只含危险化学品的废弃物应交由专业处理机构处理。
g）所有含有生物样本的废弃物都被认为具有生物危险性，应用121℃、15min高压蒸汽灭
菌处理后，装入黄色医疗垃圾袋，交由医疗废弃物处理专业机构处理。
h）高压后废弃物应被贮存在集中存放废弃物的设施中。
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附录A
（资料性）
临床标本采集的标准工作程序
A.1 血液标本采集程序
A.1.1 定义
静脉或动脉穿刺血液标本（blood specimens）：从病人静脉或动脉穿刺获取的可提供的
用于生化检验或医学研究的血液标本。
添加剂（additive）：除采血管的管壁和管盖上的涂料外，以实现某种目的为目标，在血
标本采集过程中加入采血管中的有效化学成分。常用的添加剂成分有惰性分离胶和促凝剂、肝
素、枸橼酸钠及EDTA等。
A.1.2 血液采集步骤
血液采集步骤如下。
a）采血前准备：核对样本采集名单及受试者姓名，向受试者解释操作目的并取得配合，
在采血管上贴好与采集记录相对应的标签。
b）穿戴工作服、口罩、帽子，手消毒、戴无菌手套。
c）选择血管，常用肘窝静脉、肘正中静脉、前臂内侧静脉。
d）在穿刺部位肢体下放一次性垫巾、止血带。
e）用复合碘棉签消毒穿刺部位。
f）在静脉穿刺部位上方4cm～7cm处扎止血带，嘱受检者握紧拳头，使静脉充盈显露。
g）穿刺：摘掉静脉穿刺针上的保护套，以左手固定受试者前臂，右手拇指和食指持穿刺
针，沿静脉走向使针头和静脉呈30°，快速刺入皮肤。然后呈5°向前刺破静脉壁进入静脉腔，
见回血后将针端连接负压管，血液自动流入试管内。如需多管血样，将穿刺端拔出，刺入另一
做好标记的负压真空管即可。达到采血量后，松开压脉带，嘱受检者松拳，拔下刺塞端的采血
试管。用消毒干棉签压住穿刺孔，拔出针头，嘱受检者继续按压3min～5min，勿揉。
h）若一次采集血需要采集多项标本时，推荐采血顺序为：
1）血培养管；
2）无添加剂管；
3）凝血试验管；
4）有添加剂的管依次为：枸橼酸钠管、肝素管、EDTA管。
i）将收集到的血液分装至冻存管中，贴标签后放入-80℃冰箱入库保存。
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A.1.3 注意事项
注意事项如下：
a）提前一天的晚餐应避免饮酒、禁食高脂肪、高蛋白饮品，禁食咖啡、浓茶、高糖及可
乐类饮料，避免剧烈运动;
b）在平静状态抽血，避免情绪激动;
c）禁止从输液三通管采血;
d）应在输液结束30min以后再采血，避免从正在输液的肢体上采血。
A.2 痰标本采集程序
A.2.1 定义
即时痰：就诊时深呼吸后咳出的痰液；
晨痰：患者晨起后，立即用清水漱口后，咳出的第2口、第3口痰液；
夜间痰：送痰前一日，患者晚间咳出的痰液。
A.2.2 痰液采集步骤
痰液采集步骤如下。
a）留痰前准备：穿戴工作服、口罩、帽子，手套,向留痰者解释痰液留取目的及留取方法
并取得合作，在痰瓶上贴好与采集记录相对应的标签。
b）核对样本采集名单及受试者姓名，将痰瓶交与受试者。
c）留痰者到远离人群的开放空间，或通风良好的留痰室,以清水漱口。
d）留痰者深呼吸2次～3次，每次用力呼出。
e）留痰者从肺部深处咳出痰。
f）留痰者将打开盖的痰瓶靠近嘴边收集痰液。
g）留痰者拧紧管盖,交至运送人员。
h）运送人员检查容器盖是否拧紧，如边缘有痰液污染应以消毒巾擦拭消毒；核对样本信
息及时将痰容器及相关表单送至接收实验室。
i）实验员核对样本信息，及时在符合生物安全要求的条件下进行样本处理，将处理好的
痰液分装至冻存管中，贴标签后放入-80℃冰箱入库保存。
A.3 胸水标本采集程序
A.3.1 定义
胸水：又称胸腔积液。正常情况下，胸膜腔两层胸膜间内含浆液，约为每千克体重
0.1mL～0.2mL，通常无色、透明，起润滑胸膜作用，它的渗出和再吸收处于平衡状态。任何因
素造成其渗出增加和(或)再吸收减少，即出现胸膜腔内液体积聚，形成胸腔积液。
A.3.2 胸水采集步骤
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胸水采集步骤如下。
a）经X线摄胸片，B超或CT定位胸水量，定位进针点和进针深度。
b）向受试者解释操作目的及注意事项并取得配合。
c）穿戴工作服、口罩、帽子，手消毒、戴无菌手套。
d）穿刺点周围，以10cm～15cm为半径，圈状常规消毒、盖洞巾，用2%利多卡因自皮肤到
胸腔做逐层局部麻醉。
e）根据穿刺点及进针深度进针，抽出液体后，固定穿刺针，连接一次性无菌引流袋。
f）引流袋悬挂于患者身旁低位做持续性体位引流。
g）待胸水不再流出后，拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，用胶布固定。
h）将收集到的胸水分装至冻存管中，贴标签后放入-80℃冰箱入库保存。
A.3.3 注意事项
注意事项如下：
a)穿刺后，患者不能咳嗽，以免咳嗽中肺部收缩，引起穿刺针划伤肺部；
b)穿刺时患者如出现晕眩、恶心、心悸等症状时，立即停止操作，并作相应的处理。
A.4 脑脊液标本采集程序
A.4.1 定义
脑脊液：也称脑脊髓液，是充满在脑部内颅骨与大脑皮质之间的蛛网膜下腔的透明体液，
即位于脑膜的蛛网膜和软脑膜之间的透明液体。
A.4.2 脑脊液采集步骤
脑脊液采集步骤如下：
a）向受试者解释操作目的及注意事项并取得配合。
b）穿戴工作服、口罩、帽子，手消毒、戴无菌手套。
c）患者侧卧于硬板床上，背部与桌面垂直，头部尽量向前胸屈曲，两手抱膝紧贴腹部，
使躯干尽可能呈弓形；或由助手在术者对面用一手挽患者头部，另一手挽双下肢腘窝处并用力
抱紧，使脊柱尽量后凸以增宽椎间隙，便于进针。
d）确定穿刺点，通常以双侧髂棘最高点连线与后正中线的交汇点为穿刺点，此处相当于
第3～4腰椎棘突间隙，有时也可以在上一或下一腰椎间隙进行。
e）穿刺点周圈常规消毒、盖洞巾，用2%利多卡因自皮肤到椎间韧带做逐层局部麻醉。
f）术者用左手固定穿刺点皮肤，右手持穿刺针以垂直背部、针尖稍斜向头部的方向缓慢
刺入，成人进针深度约为4cm～6cm，儿童约2cm～4cm。当针头穿过韧带与硬脑膜时，有阻力突
然消失感。此时可将针芯慢慢抽出（以防脑脊液迅速流出，造成脑疝），可见脑脊液流出。
g ） 放液前先接上测压管测量压力。正常侧卧位脑脊液压力为70mmH2O ～ 180mmH2O
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（0.098kPa=10mmH2O）或40滴/min～50滴/min。
h）撤去测压管，收集脑脊液2mL～5mL，用无菌试管留标本。
i）术毕，将针芯插入后一起拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，用胶布固定。
j）去枕平卧4h～6h，以免引起术后低颅压头痛。
k）将收集到的脑脊液分装至冻存管中，贴标签后放入-80℃冰箱入库保存。
A.4.3 注意事项
注意事项如下。
a)严格掌握禁忌证，凡疑有颅内压力升高者应先做眼底检查，如有明显视乳头水肿或有脑
疝先兆者，禁忌穿刺。凡患者处于休克、衰竭或濒危状态以及局部皮肤有炎症、颅后窝有占位
性病变者均列为禁忌。
b)穿刺时患者如出现呼吸、脉搏、面色异常等症状时，立即停止操作，并作相应的处理。
c)鞘内给药时，应先放出等量脑脊液，然后再等量置换性药液注入。
A.5 支气管肺泡灌洗液标本采集程序
A.5.1 定义
支气管肺泡灌洗术（bronchoalveolar lavage,BAL）是应用纤维支气管镜进行支气管肺泡
灌洗，收集肺泡表面衬液进行病原体、炎症与免疫细胞、可溶性物质和组织病理检查的方法。
支气管肺泡灌洗液（bronchoalveolar lavage fluid, BALF）：通过支气管肺泡灌洗术获
得的液体。
A.5.2 支气管肺泡灌洗液采集步骤
支气管肺泡灌洗液采集步骤如下：
a）取支气管肺泡灌洗液前准备：核对样本采集名单及受试者姓名，向受试者解释操作目
的及留取方法并取得配合；
b） 操作者穿戴工作服、口罩、帽子，手消毒、戴无菌手套；
c） 受试者进行局部麻醉；
d） 将纤维支气管镜插入右肺中叶或左肺舌段的支气管，将其项端契入支气管分支口；
e） 经气管活检孔缓缓注入37℃灭菌生理盐水，每次30mL～50mL，总量100mL～250mL，不
应超过300mL；
f） 每次注液后以-13.3kpa～-19.95kpa负压吸出，要防止负压过大，过猛。
A.6 组织样本（如活检组织、手术组织等）采集程序
应经伦理委员会批准并获得患者知情同意后，可切取特定部分样本用作研究用途。在采集
手术样本时，应注意不能对病理诊断及治疗造成影响。诊断性病理检查后剩余的手术样本可被
采集。为保持样本新鲜，样本从手术科室到病理科或到临床生物样本库的运送过程中无需固定，
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将样本置于无菌容器中并将容器置于冰上（2℃～8℃）。除非研究有特殊要求，否则组织样本
一般直接放在有标签的、配有生物低温介质的无菌容器里并移交给临床生物样本库处理。监督
样本的采集或活检过程，样本的特征应记录并保存，使终端用户能够借此判断组织的有效性。
A.7 尿液采集程序
A.7.1 定义
尿(urine)：又称尿液或小便，是经由泌尿系统及尿路排出体外的液体排泄物。
A.7.2 尿液的采集步骤
尿液的采集步骤如下：
a)打开尿液采集容器（120mL尿液采集广口容器）；
b) 不得接触杯子或杯盖内侧；
c) 将第一段尿液排到厕所内；
d) 在容器中收集中间（中段）尿标本；
e) 拧紧容器上的盖子。
A.8 便标本采集程序
采集新鲜便标本收集于无菌容器中。
A.9 其他类型标本采集程序
如心包积液、腹水、拭子、骨髓等，依照卫生管理部门发布的标准文件进行采集。
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附录B
（资料性）
试剂耗材
试剂耗材如下：
a)无菌螺旋口耐低温血清冻存管；
b)吸管；
c)记号笔；
d)移液器；
e)吸头；
f)比重1.077±0.001的聚蔗糖-泛影葡胺(商品名为淋巴细胞分离液)；
g)10%胎牛血清RPMI1640；
h)0.2%台盼蓝染色液，用等渗的PBS配制；
i)一次性无菌尖底离心管（15mL）；
g)一次性无菌尖底离心管（50mL）；
k)一次性塑料吸管(3mL)；
l)一次性移液管(10mL)；
m)无菌吸管；
n)2.5mL自立式刻度冻存管；
o)无菌用品：手套、纱布、剪刀、镊子、刀柄、刀片等；
p)2英寸冷冻保存盒；
q)组织清洗液及组织保存液；
r)标本条形码标签；
s)冷冻记号笔；
t)核酸提取试剂盒；
u)二甲基亚砜（DMSO，分析纯）；
v)二硫苏糖醇（DTT）；
w)中性罗氏培养基；
x)油酸-白蛋白-右旋糖-过氧化氢酶（ oleic acid-albumin-dextrose-catalase，OADC)
添加剂；
y)7H9冻存液（含20%甘油）:称取4.75g7H9粉末，200mL甘油，蒸馏水补齐至900mL，121℃，
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15min高压灭菌，待温度降至50℃，加入100mL OADC，置于4℃冰箱冷藏保存待用；
z) 其他适宜试剂耗材。
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附录C
（资料性）
设备
设备如下：
a)高速低温离心机；
b)-80℃超低温冰箱；
c)细胞计数板；
d)显微镜；
e)水平式离心机；
f)生物安全柜；
g)样本转运箱；
h)高压灭菌器；
i)恒温培养箱；
g)-20℃冰箱；
k)恒温水浴锅；
l)倒置相差显微镜；
m)液氮罐；
n)梯度降温盒；
o)条码打印机；
p)其他适宜设备。
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附录D
（资料性）
临床常分离的非结核分枝杆菌菌种的培养条件
临床常分离的非结核分枝杆菌菌种的培养条件见表D.1。
表D.1 临床常分离的非结核分枝杆菌菌种的培养条件
分类细菌学名中文译名常用培养基最适生长温
度/℃
代期或其它特
殊情况需要描
述
慢生长分枝
杆菌
M.avium 鸟分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 2 周~4 周
M.intracellulare 胞内分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周~3 周
M.kansasii 堪萨斯分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周~3 周
M.gordonae 戈登分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 2 周~3 周
M.parascrofulaceum 副瘰疬分枝杆菌罗氏培养基37 3 周~4 周
M.szulgai 苏尔加分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周~2 周
M.xenopi 蟾分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3 周~4 周
M.scrofulaceum 瘰疬分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 2 周~3 周
M.simiae 猿分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 4 周
M. asiaticum 亚洲分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 2 周~4 周
M.haemophilum 嗜血分枝杆菌MH 30 4 周~6 周
M. farcinogenes 产鼻疽分枝杆菌7H9， 罗氏
培养基
37 ≥3 周
M. komossense 科莫斯分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
30 2 周
M.malmoense 玛尔摩分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3 周~5 周
M.gastri 胃分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 2 周~4 周
M.nonchromogenicu
m
不产色分枝杆菌7H9，7H10, 37 8d~10d
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罗氏培养基
M.triviale 次要分枝杆菌7H9，7H10 37 7d~10d
M. terrae 土分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 >2 周
M.genavense 日内瓦分枝杆菌7H9，7H10 37 3 周~6 周
M.lentiflavum 慢生黄分枝杆菌罗氏培养基37 3 周~4 周
M.triplex 三重分枝杆菌7H10 37 4 周~6 周
M. chimaera 奇美拉分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周~3 周
M.marinum 海分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
30 7d~10d
M.ulcerans 溃疡分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
30 4 周~6 周
快生长分枝
杆菌
M. flavescens 浅黄分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周
M. diernhoferi 迪氏分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 ≥1 周
M. paratuberculosis 副结核分枝杆菌#1507 37 <1 周
M. senegalense 塞内加尔分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3d~5d
M. agri 田野分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周
M. chubuense 楚布分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3d~4d
M. duvalii 杜氏分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周
M. gadium 加地斯分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3d~d 天
M. obuense 奥布分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 4d~5d
M. rhodesiae 罗德岛分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 4d~7d
M. tokaiense 东海分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3d
M. porcinum 猪分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 4d~5d
M. fallax 诡诈分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
30 3d~5d
M. austroafricanum 南非分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 7d~10d
M. pulveris 灰尘分枝杆菌7H9，罗氏
培养基
37 3d~5d
M. chitae 千田分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周
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M. szulgai 苏加分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 4d~5d
M. boenickei 波氏分枝杆菌大豆肉汤/琼
脂
37 3d
M.houstonense 霍斯顿分枝杆菌脑心浸液肉
汤/琼脂
37 2d
M.arupense 棕色分枝杆菌7H9，7H10 37 1 周
M.abscessus 脓肿分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3d~5d
M.chelonae 龟分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 5d~7d
M. fortuitum 偶发分枝杆菌7H10,罗氏培
养基
37 3d
M.smegmatis 耻垢分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3d
M.phlei 草分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 4d~7d
M.themoresistibile 抗热分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 7d~10d
M.aurum 金色分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 >7d
M.gilvum 浅黄分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 5d~14d
M.massiliense 马赛分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3d~5d
M.immunogenum 免疫分枝杆菌7H9，7H10 30 1 周
M.mucogenicum 产黏液分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 7d~14d
M.septicum 败血症分枝杆菌7H10 37 3d
M.holsaticum 荷尔斯泰因分枝杆菌7H10 30 >7d
M.peregrinum 外来分枝杆菌7H9，7H10 30 5d~7d
注：M．为Mycobacterium 的缩写。
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29
参考文献
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detection. Geneva: World Health Organization; 2020. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO.
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[5] Definitions and reporting framework for tuberculosis – 2013 revision (updated December 2014)
[WHO/HTM/TB/2013.2]. Geneva, Switzerland: WorldHealth Organization; 2013.
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tuberculosis and rifampicin resistance in adults and children: 2013.
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update. Geneva: World Health Organization; 2016.
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[9]李仁忠，王黎霞.实验室新技术用于耐药结核病诊断流程的建议.中华结核和呼吸杂志，2016,39
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[10] 病原微生物实验室生物安全管理条例（国务院令第424号）
[11] 可感染人类的高致病性病原微生物菌（毒）种或样本运输管理规定（卫生部令第45号）
[12] 人间传染的病原微生物目录（国卫科教发[2023]24号）
[13] 《中华人民共和国行政许可法》（中华人民共和国主席令第29 号）
[14] 《中华人民共和国人类遗传资源管理条例》（中华人民共和国国务院令第717号）
CCS C 05
团体标准
T/CHATA 040—2024结核病相关临床样本保藏规范
Storage specification for clinical specimen of tuberculosis
2024-08-19发布2024-08-19实施
中国防痨协会发布
目次
前言.................................................................................. IV
1 范围................................................................................. 1
2 规范性引用文件....................................................................... 1
3 术语和定义........................................................................... 2
4 保存及保藏原则.......... 4
4.1 保存原则....................................................................... 4
4.2 保藏原则....................................................................... 5
5 生物安全管理原则......................................................................5
6 人类遗传资源采集备案................................................................. 5
7 样本采集............................................................................. 5
7.1 基本要求........................................................................6
7.2 样本采集的时间................................................................. 6
7.3 温度........................................................................... 6
7.4 样本的采集程序................................................................. 6
8 样本运输............................................................................. 6
8.1 运输原则....................................................................... 6
8.2 申请........................................................................... 6
8.3 包装........................................................................... 7
8.4 运输........................................................................... 8
9 样本验收与登记....................................................................... 8
9.1 信息记录....................................................................... 8
9.2 样本标识....................................................................... 9
10 样本实验室处理和保存/保藏........................................................... 9
10.1 血清或血浆样本................................................................ 9
10.2 外周血单个核细胞样本......................................................... 10
10.3 细胞冻存................................................... 错误！未定义书签。11
10.4 痰样本....................................................................... 11
10.5 尿液样本..................................................................... 12
10.6 体液样本（如胸水、腹水、脑脊液和脓液等） ..................................... 12
10.7 消化道样本................................................................... 13
10.8 分枝杆菌的收集和保存......................................................... 13
10.9 组织样本..................................................................... 13
11 样本分装........................................................................... 14
12 存储样本的质量控制..................................................................14
12.1 固体组织样本................................................................. 14
12.2 组织切片..................................................................... 15
12.3 液体样本..................................................................... 15
12.4 细胞样本..................................................................... 15
T/CHATA 040—2024
III
12.5 微生物样本................................................... 错误！未定义书签。
12.6 生物分子样本................................................................. 15
13 废弃样本的处理......................................................................15
13.1 基本原则..................................................................... 15
13.2 处置要求..................................................................... 16
附录A （规范性）临床标本采集的标准工作程序............................................17
附录B （资料性）试剂耗材..............................................................22
附录C （资料性）设备..................................................................24
附录D （资料性）临床常分离的非结核分枝杆菌菌种的培养条件..............................25
参考文献.............................................................................. 28
T/CHATA 040—2024
IV
前言
本文件按照GB/T 1.1—2020《标准化工作导则第1部分：标准化文件的结构和起草规
则》的规定起草。
请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。
本文件由首都医科大学附属北京胸科医院、中国疾病预防控制中心共同提出。
本文件由中国防痨协会归口。
本文件起草单位：首都医科大学附属北京胸科医院、中国疾病预防控制中心、首都医
科大学附属北京儿童医院、中国人民解放军总医院第八医学中心、上海肺科医院、上海市
疾病预防控制中心、天津市海河医院、湖南省胸科医院、福州肺科医院、河南省胸科医院、
武汉肺科医院、河北省胸科医院、遵义医学院附属医院。
本文件主要起草人：黄海荣、赵雁林、姜广路、张宗德、孙照刚、夏辉、王桂荣、霍
凤敏、于霞、陈素婷、申阿东、吴雪琼、余方友、沈鑫、张丽霞、谭云洪、黄明翔、王伟、
刘冠、车南颖、郑立恒、宗兆婧。
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1
结核病相关临床样本保藏规范
1 范围
本文件规定了结核病临床生物样本保藏的相关设备、设施及环境的要求，以及样本采集、
处理、贮存及管理的相关要求。
本文件适用于开展结核病生物样本保藏和保存的各级各类医疗卫生机构和科研机构。
2 规范性引用文件
下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日期的
引用文件，仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有
的修改单）适用于本文件。
GB 19489—2008 实验室生物安全通用要求
GB/T 37864-2019 )生物样本库质量和能力通用要求
HJ 628-2011 生物遗传资源采集技术规范（试行）
GB 50346-2012 实验室建筑技术规范
GB 19489-2008 实验室生物安全通用要求
CNAS-CL05-2009 实验室生物安全认可准则
GB/T 27025-2008 检测和校准实验室能力的通用要求
GB/T 18883-2002 室内空气质量标准
MH/T 1019-2005 民用航空危险品运输文件
GB/T 5458-2012 液氮生物容器
WS/T 224-2002 真空采血管及其添加剂
GB/T 20269-2006 信息安全技术信息系统安全管理要求
GB/T 1.1-2009 标准化工作导则第1 部分：标准的结构和编写
GB/T 12905-2000 条码术语
GB/T 17172-1997 四一七条码GB/T 18347-2001 128 条码
3 术语和定义
下列术语和定义适用于本文件。
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2
3.1
临床样本clinical specimen
从人体获得或衍生的任意临床检测物质。[来源：ISO 20387：2018，3.7]
3.2
临床生物样本库clinical specimen bio-bank
经标准化采集、处理、贮存和应用的健康和疾病生物体的生物大分子、细胞、组织和器官
等样本[包括人体器官组织、全血、血浆、血清、生物体液或经处理过的生物样本（DNA、RNA、
蛋白等）]，以及与这些生物样本相关的临床、病理、治疗、随访、知情同意等资料及其质量
控制、信息管理与应用系统。
3.3
捐赠者donor
按照法律规定、医学标准和程序提供生物样本的人或尸体。
注：有的国家用“受试者”或“个体”来表示捐赠者，尤其是在涉及人体样本时。
3.4
知情同意informed consent
有完全行为能力的个人或无完全行为能力个人的法定监护人获知必要信息并充分理解其内
容，经充分考虑后做出参与研究的决定，此决定不受恐吓、利诱或其他不当行为的影响。
3.5
知情同意书written consent
捐赠者或其法定监护人表示自愿捐赠个体生物样本而签署的文件。
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3
3.6
泛知情同意broad consent
知情同意的特殊形式，大多数基于生物样本库的研究其目的在样本采集当下并不能被明确，
因此，生物样本库采用特有的知情同意模式。
注：泛知情同意的特点表现为: 以该类研究对受试者的低风险性为基础，研究者对医疗数据和生物样本应
用于将来可能的研究履行“告知责任”。泛知情同意签署的目的是提升医疗数据和生物样本应用于将
来研究中的“效用”。
3.7
采集collection
已经明确研究目的而经过特别方法获取的一个或多个样本。
3.8
分装aliquot
将样本分成几份并贮存到单个容器中的过程。
注：分装后的样本即成为独立的样本个体。“分装”一词也作为名词，用来表示一个样本。
3.9
保存storage
在样本处理和贮存过程中，通过使用化学试剂、改变环境条件或者其他手段来防止或延缓
样本生物或物理性能的退化。
3.10
保藏preserve
将来源合法的人类遗传资源保存在适宜环境条件下，保证其质量和安全，用于未来科学研
究的行为，不包括实验室检测后按照法律、法规要求或临床研究方案约定的临时存储行为。
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4
3.11
标签label
任何写在、印在或贴在样本容器或包装上的手写、印刷的文字、图形或材料。
3.12
标识符labelled information
识别信息recognizable information
可以识别主体的信息，例如姓名、社保号码、医疗记录或病理号码等。
注：对于某些样本，识别信息包括分类学上的名称和收集时的编号。
3.13
匿名anonymous
不收集与样本相关的可识别的个体信息，或是收集的相关数据被隐藏而不能检索，以保证
无法追踪到样本来源。
3.14
容器container
用来放置一个或多个样本的贮存器。
3.15
灭菌sterilized
采用强烈的理化因素使任何物体内外部的一切微生物永远丧失其生长繁殖能力的措施。
T/CHATA 040—2024
5
3.16
生物危险bio-hazard
因生物因子导致的直接或潜在的危险。
4 保存及保藏的要求和原则
4.1 保存要求和原则
4.1.1 避免因物品、容器、设备的堆积堆放形成消防安全隐患。
4.1.2 宜尽可能使用相对稳定简单易行的保存处理方法，避免保存条件波动，造成保存对象
性状出现较大变化。如果使用要求条件较高的保存方法，宜有相应的场所、电力配套条件。
4.2 保藏要求和原则
4.2.1 在生物样本保藏之前，应按照要求向中华人民共和国科学技术部提交人类遗传资源采集
审批并得到批准。
4.2.2 进行任何临床标本采集都应取得捐赠者的知情同意书。特定情形需要豁免时，应由伦
理委员会根据适当的法律及法规规定审核批准。
4.2.3 临床生物样本应对样本和数据均进行匿名化处理，除非经伦理审查委员会批准样本使
用者可访问捐赠者的身份信息，否则捐赠者的身份信息应在样本提供给使用者之前删除。
4.2.4 临床生物样本和相关数据的采集、贮存和使用应建立在对个体的尊重、隐私的保护和
保密的基础上。样本的国际共享需遵循涉及国家的法律和政策。
5 生物安全管理原则
5.1 确保所开展操作的生物安全风险等级与实验室生物安全等级相匹配。
5.2 生物样本的操作均要符合与结核病相关的生物安全操作规范。
5.3 建立生物安全保障制度，注重对所有相关人员开展生物安全培训。
5.4 建立生物安全风险评估体系，随时监测和分析生物安全隐患并采取防护措施。
6 人类遗传资源采集备案
根据《中华人民共和国行政许可法》和《中华人民共和国人类遗传资源管理条例》的规定，
凡在中国境内开展中国人类遗传资源活动前， 均需要在中华人民共和国科学技术部
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6
（https://www.most.gov.cn/index.html）网站提交采集保藏审批申请，获得批准后方可开展
相关活动。
7 样本采集
7.1 基本要求
7.1.1 样本的采集和处理应有专属场地，不应场地兼作办公使用。
7.1.2 采集人员应经过职业道德规范、意外情况应急处理、生物安全知识和伦理规范的培训、
考核，切实保护被捐赠者的隐私，严格遵守临床生物样本库的各项规章制度。
7.1.3 样本的捐赠应经由捐赠者知情同意，每份样本都有对应的知情同意书或泛知情同意书。
7.2 样本采集的时间
根据不同的研究应用目的，标本采集和处理的时间节点有所不同。当标本处于缺血或离体
状态时，应尽快贮存于低温环境下。需对采集、处理、贮存、运输过程进行记录。
7.3 温度
标本采集后至运送前时间和温度的控制极其重要，应根据标本采集类型和后续开展研究内
容决定样本采集、处理和贮存的适宜温度。采集和处理时间应记录在案，并提供给最终用户。
7.4 样本的采集程序
临床标本的采集标准流程，见附录A。
8 样本运输
8.1 原则
结核分枝杆菌属于《人间传染的病原微生物目录》中第二类高致病病原微生物，其相关的
生物样本的运输包装分类为A类的病原微生物菌（毒）种或样本。对于疑似高致病性病原微生
物菌（毒）种或样本，其申请、包装和运输原则见《可感染人类的高致病性病原微生物菌（毒）
种或样本运输管理规定》。新鲜标本采用常温或冷藏运输，冷藏运输的介质多为冰袋，一般用
于医院内、短时间或近距离运输。
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7
8.2 申请
8.2.1 申请文件
从事疾病预防控制、医疗、教学、科研、菌（毒）种保藏以及生物制品生产的单位，因工
作需要，可申请运输高致病性病原微生物菌（毒）种或样本。申请运输高致病性病原微生物菌
（毒）种或样本的单位（以下简称申请单位），在运输前首先向相关卫生行政管理机构提出申
请，并提交以下7类申请材料：
a）运输事由（例如合作开展科研项目的证明）等要求提供的材料；
b）容器或包装材料的批准文号、合格证书（复印件）或者高致病性病原微生物菌（毒）
种或样本运输容器或包装材料承诺书；
c）接收高致病性病原微生物菌（毒）种或样本的单位(以下简称接收单位)取得有关政府
主管部门核发的从事高致病性病原微生物实验活动、菌（毒）种或样本保藏、生物制品生产等
的批准文件；
d)接收单位具备从事高致病性病原微生物实验活动资格的实验室证明；
e)接收单位同意接收的证明文件；
f)申请单位和接收单位的法人资格证明材料（复印件）；
g)可感染人类的高致病性病原微生物菌（毒）种或样本运输申请表。
8.2.2 批准单位
申请在省级行政区域内运输的，由省级卫生健康管理部门审批，符合要求的申请，由省级
卫生健康管理部门颁发“可感染人类的高致病性病原微生物菌（毒）种或样本准运证书”。申
请跨省运输的，先由省级卫生健康管理部门进行初审，符合要求的上报国家卫生健康管理部门
进行审批，并获得相关准运证书。
8.3 包装
运输结核分枝杆菌菌株或可能含结核分枝杆菌样本的容器或包装材料应达到国际民航组织
《危险物品航空安全运输技术细则》（Doc9284号文件包装说明PI602）规定的A类包装标准，
符合防水、防破损、防外泄、耐高温、耐高压的要求，并应印有国家卫生健康委员会规定的生
物危险标签、标识、运输登记表、警告用语和提示用语。符合UN2814要求的包装可运输菌株和
样本，符合UN3373要求的包装只能运输样本。
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8
8.4 运输
经陆路运输高致病性病原微生物菌（毒）种或样本，至少2人护送。申请单位应对护送人
员进行相关的生物安全知识培训。需航空运输时，申请单位应凭省级以上卫生健康管理部门或
中国疾病预防控制中心核发的“可感染人类的高致病性病原微生物菌（毒）种或样本准运证书”
到民航等相关部门办理手续。通过民航运输的，托运人应按照《中国民用航空危险品运输管理
规定》（CCAR276）和国际民航组织文件《危险物品航空安全运输技术细则》(Doc9284号文件)
的要求，正确进行分类、包装、加标记、贴标签并提交正确填写的危险品航空运输文件，交由
民用航空主管部门批准的航空承运人和机场实施运输。如需由未经批准的航空承运人和机场实
施运输的，应经民用航空主管部门批准。
9.样本验收与登记
9.1 信息记录
样本发出人员、接收人员应做好样本交接的记录工作。记录内容包括但不限于：样本发送
时间、样本清单、发送人、接收人、接收时间、运送条件、不合格样本情况及处置信息。
9.2 标本验收
标本送达实验室后按要求进行验收，验收内容包括但不限于：
a) 容器外观及信息核对：容器有无破裂;样本标号是否清楚、与纸版记录（或电子记录）
是否相符；
b) 验收样本数量与所填写数量是否一致；
c) 检查样本的量及性状：外观质量有无溶血、血清有无乳糜、抗凝血中有无血块；
d) 样本采集及送达之间的时间间隔，必要时查验样本是否新鲜及了解样本采集后的保存
方法。
9.3 不合格标本处理
对于不合格标本，如空管、抗凝血凝固、严重溶血、采集管破裂、脂血样本，签收人有权
拒收，同时注明拒收原因。
对不合格但可以接受的样本，如样本量过少等，签收人记录样本缺陷，及时与相关人员沟
通，以尽可能重新采集样本。
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9
9.4 样本标识
样本标识采用标签标记，宜采用二维条形码或一维条形码。贮存生物样品的每个容器应有
唯一的、清晰明确的识别符号，能够牢固附着在容器上，并能耐受低温贮存的条件。所有的相
关信息能够与此唯一标识符相关联。
样本验收合格后，根据研究需求，生成、打印样本标签（与分装的样本类型、数量对应），
并将标签贴到拟存放分装样本的容器表面。
10 样本实验室处理和保存/保藏
10.1 试剂耗材和设备
试剂耗材见附录B，设备见附录C。
10.2 血清或血浆样本
10.2.1 处理方法与保存
处理方法与保存方法如下。
a）真空采血管应一直保持封闭垂直位置直到离心取出血清或血浆，防止震荡过于剧烈造
成溶血。
b）血清（非抗凝血）或血浆（抗凝血）：采血后抗凝血标本需颠倒混合5 次～10 次，非
抗凝血室温静置15min～30min 后可自行完全凝固。离心2000r/min，10min 后分离血清或血浆
至冻存管，每份标本适量分装。
c）标本冻存管按顺序放置于冻存盒中，置于低温冰箱保存（温度依据后续研究用途选
定）。
10.2.2 注意事项
注意事项如下：
a）血清中不能混有血丝、纤维丝；
b）取到标本后尽快在短时间内处理；
c）后续开展RNA 相关研究的样本应存入-80℃冰箱，避免反复冻融，用于其他用途可酌情
放置于-20℃或-40℃或其他温度的冰箱保存。
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10
10.3 外周血单个核细胞（peripheral blood mononuclear cell, PBMC) 样本
10.3.1 处理方法与保存
处理方法与保存方法如下。
a）依据所获得抗凝全血量取15mL 或50mL 离心管(10mL 全血可用15mL 离心管，10mL 以上
全血可用多支15mL 离心管或50mL 离心管)，向管内加入淋巴细胞分离液，与全血的比例为
1:2。
b）将已加入淋巴细胞分离液的离心管与桌面呈45°夹角, 将混合均匀的抗凝全血用滴管
沿管壁缓慢叠加于分层液面上，注意保持清晰的界面。2000r/min 水平离心20min。
注:离心机不能骤停，一定要关掉面板上的BRAKE 键。
c）小心取出离心管，离心后管内分为三层：上层为血浆，下层主要为红细胞和粒细胞，
中层为淋巴细胞分离液。在上、中层界面处有一以单个核细胞为主的白色云雾层狭窄带。单个
核细胞包括淋巴细胞和单核细胞，还含有血小板。
d）用吸管小心吸取最上层的血浆，分装保存。在液面距云雾层1cm 处停止吸取，注意不
要干扰云雾状的PBMC 层。
e）用毛细管插到云雾层，吸取单个核细胞层液体。置入另一灭菌的离心管中，加入5 倍
以上体积的RPMI-1640 培养基，1500r/min 离心10min，弃去上清，可见管底部乳白色的细胞
团。将细胞团轻柔吹打，再次加入10mL RPMI1640，1500r/min 离心10min 洗涤细胞。
f）末次离心后，弃上清。弹起管底细胞团，加入含有10％胎牛血清的RPMI1640，重悬细
胞。取10μL 细胞悬液与10μL 的0.2%台盼兰染液混合，于血球计数板上计数4 个大方格内
的细胞总数，或使用细胞计数仪计量细胞总数。
g）细胞活力检测：台盼兰染色后，死细胞可被染成蓝色，活细胞不着色。计数200 个淋
巴细胞。计算出活细胞百分率。
活细胞数
活细胞百分率＝ ×100%
总细胞数
h）预期收获：用本法分离PBMC，健康人每毫升外周血可分离得到大约（1～2）×106
PBMC，纯度在90％以上，收获率可达80％～90％，活细胞百分率＞95％。
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10.3.2 注意事项
注意事项如下。
a）抽取人外周静脉血时要注意无菌操作，与抗凝剂充分混合。
b）操作全程应尽可能在采血后6h 内完成，以免增加死细胞数。
c）用淋巴细胞分离液分离PBMC 时，离心机转速的增加和减少要均匀、平稳，以便保持清
晰的界面。
d）为减轻标本中红细胞浓度过高引起的聚集，改善分离效果，可用培养液对标本进行稀
释。
e）分离液与培养液在实验前恢复至室温。最佳温度为18℃～20℃。温度低可能影响分离
效果，而当温度过高，细胞的活力受到影响，容易导致红细胞聚集而影响分离。
10.4 细胞冻存
10.4.1 处理方法与保存
处理方法与保存方法如下。
a）配制细胞冻存液（含10% DMSO或甘油的胎牛血清）：DMSO与胎牛血清1∶9配制，混匀，
4℃冰箱预冷备用。
b）将梯度降温盒放置于4℃冰箱预冷备用。
c）将分离获得的PBMC加入适量配制好的冻存培养液，用吸管轻轻吹打混匀。冻存细胞终
密度宜为5×106/mL。
注：尽量减少吹打次数,以免DMSO放热损伤细胞。
d）将细胞适量分装入冻存管中。
e）将冻存管放入梯度降温盒中，放入-80℃冰箱，过夜。
f）取出冻存管，移入液氮容器内。标记位置。
g）冻存有效时间：细胞贮存在-80℃中可保存一年；细胞贮存在液氮中(-196℃)，理论上
贮存时间可为无限长。
10.4.2 注意事项
注意事项如下。
a）在冻存细胞时细胞冻存液要经过预冷，避免DMSO放热对细胞造成损伤。
b）冻存过程中温度的缓慢下降是细胞活性的良好保障。宜使用梯度降温盒，以保证细胞
温度有规律地缓慢下降，避免快速降温导致的细胞温度不均。
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10.5 痰样本
10.5.1 处理方法与保存
处理方法与保存方法如下。
a）制备0.1% 二硫苏糖醇（DTT）贮存液：
1）取10 mg DTT溶解于10mL的PBS中（无菌，细胞级，pH 7.4±0.2）；
2）经0.22μm滤膜的滤器过滤除菌，制备1mL等分试样；
3）混合均匀，在容量瓶上标注试剂名称、配置浓度、制备日期和到期日期。
b）使用DTT处理痰液标本的程序：
1）准备并使用合适的标本条形码标签标示冷冻管；
2）确定加入痰液标本的DTT工作液体积，得到最终浓度为0.01% DTT；
3）DTT溶液和痰液标本均必须处于室温下，以便有效地进行消化过程；
4）漩涡振荡标本20s；
5）将标本放置于平台振荡器上，以60 r/min的速度机械震荡20min；
6）使用无菌移液管，向每个预先标识的2mL冷冻管中转移1mL经DTT均质化处理后的痰液，
制备等分样本；
7）盖紧瓶盖并密封每个冷冻管；
8）在-80℃下贮存痰液等分样本。
10.5.2 注意事项
贮存液（0.1% DTT）应立即使用，否则在2℃~8℃下最长可贮存48h。
10.6 尿液样本
10.6.1 处理方法与保存
处理方法与保存方法如下。
a）尿液标本应贮存在15mL离心管的冷冻保存盒中。
b）使用合适的条形码标签标识冷冻管。
c）分装之前充分混匀尿液，每40mL尿液中加入1mL TE 缓冲液（0.5M 乙二胺四乙酸
(EDTA)，0.5M Tris-HCL, pH 8.5)。
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d）使用无菌移液管，在每一个冷冻管中分装10mL，拧紧盖子，冻存。
e）确认每一个冷冻管均贴有合适的预先打印的条形码标签。
f）将冷冻保存盒放置于-80℃冷冻冰箱中保存。
10.6.2 注意事项
冻存需使用耐低温冻存盒。不宜使用泡沫制盒子，其在低温冷冻状态下易被挤压开裂。
10.7 体液样本（如胸水、腹水、脑脊液、支气管肺泡灌洗液和脓液等）
处理方法与保存方法如下:
a）在生物安全柜中分装体液样本，每管1.5mL；
b）盖紧瓶盖并密封每个冷冻管；
c）在-80℃下贮存体液等分样本。
10.8 消化道样本
将新鲜样本置于不透水的贮存容器内，直接冷冻保存或分装后冷冻保存。新鲜胃液标本需
要先进行中和后再冷冻保存，或分装后冷冻保存。
10.9 分枝杆菌的收集和保存
本文件规定的分枝杆菌包括结核分枝杆菌复合群（Mycobacterium tuberculosis complex，
MTBC）和非结核分枝杆菌。不同的分枝杆菌菌种有类似的操作规范，但结核分枝杆菌复合群与
非结核分枝杆菌的操作在生物安全防护级别存在差异。此外，少数非结核分枝杆菌菌种需要特
定的培养基、特定的培养温度（见附录D）。以下方案以结核分枝杆菌为例，适用于多数非结
核分枝杆菌。
a）固态培养基生长的结核分枝杆菌：
1）选取在固体培养基上生长良好的新鲜菌落（生长周期不超过2 个月，初生长2 周~3
周内的菌株状态最佳）；
2）于生物安全柜中，用刮菌环轻轻刮取培养基斜面上的菌落；
3）置于含有适量5%的Tween80 的磨菌瓶中，涡旋振荡后静止15min。
4）加入含20%甘油的7H9 培养液混匀成菌悬液,吸取菌悬液置于冻存管中；
5）放置于-80℃冷冻冰箱保存。
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b）液体培养基生长的结核分枝杆菌：
1）选取近期（报告阳性不超过2 个月）液体培养报告阳性且初步鉴定为目标菌种的培养
管。
2）离心（12000r/min，5min）后，于生物安全柜中收集细菌。
3）将菌落分散于含灭菌5mL Middlebrook 7H9 培养基（含甘油至终浓度为20%）的试管
中，小心上下吸打使菌液混合均匀。
4）每管1mL 分装后立即贮存在-80℃冰箱。
10.10 组织样本
处理方法与保存方法如下。
a）组织标本由医生在术中切除获得。将切除后的新鲜组织样本放入灭菌容器内。
b）密封灭菌容器，确保样本无菌。
c）将装有组织样本的灭菌容器放入组织样本标本袋内，并在袋上标记捐赠者姓名、病案
号。将标本袋放入样本转运箱，交给样本转运人员。
d）样本转运人员将组织样本在15min～30min 内转运至样本接收室。
e）对接收的样本进行核对和检查，对捐赠者姓名、科室、住院号及标本部位核对和确认
无误后，接收样本。
f）实验员在生物安全柜内对样本进行取材。
g）将样本放入到相应的组织清洗液离心管内反复清洗3 次。
h）转移到已加入组织保存液的离心管中，做好标记。
i）转移至冻存管中低温冻存，或直接用于组织细胞的后续分离培养等工作。
11 样本分装
分装处理样本的实验室应符合GB 19489—2008 中生物安全实验室的要求。样本处理时应
合理地分配有限的样本，并尽量保持样本原有的形态。每份完整或分装处理的样本都应分配条
形码编号。
样本分装要求如下：
a）应按原始样本的性质，控制原始样本从采集离体到开始处理的时间；
b）完成处理的样本在贮存前应选择适宜的分装量进行分装，满足使用要求的同时避免对
生物样本的反复冻融；
c）在处理前对样本进行必要的检测，以确定采集的样本是否满足要求及明确样本的一些
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特性和质量数据；
d）对所有处理过程中和处理完成准备贮存和使用的样本进行唯一性标识处理，确保其能
追溯到采集的原始样本。
12 存储样本的质量控制
12.1 通则
为保证贮存样本的质量，应定期随机抽检一定数量的样本，开展样本适宜的检测，以了解
保藏样本的质量。通过抽检的方式反映同期同一类型标本的质量随保存时间延长的变化。目前
还缺乏公认的样本抽取数量和抽查周期的标准。可根据保藏标本的数量、标本来源的珍贵性、
未来开展检测的目的等设置符合自身情况的抽检标本方案。可采用固定抽取比例或是固定抽取
数量的抽查方案。
12.2 固体组织样本
固体组织样本应符合研究方案的需求，其质量控制应由病理学专业技术人员、细胞生物学
专业技术人员，或是经过培训的专业技术人员完成。通过对样本的显微镜检查和对核酸以及蛋
白质等特殊分子的检测进行质量控制。
12.3 组织切片
组织切片通过对肉芽肿百分比、干酪样坏死百分比、细胞结构和其他形态特征的检测来进
行质量控制。由病理学专业技术人员、细胞生物学专业技术人员，或是经过培训的专业人员完
成。
12.4 液体样本
对于液体样本如血清、血浆、尿液、脑脊液等，对其中的特定物质实施检测以进行质量控
制。用分子标志物来评估样本质量，如用血红蛋白来评估溶血情况。如需进行某一特定细胞因
子的检测，则新采集的样本也应参考冻存样本中该细胞因子水平进行质量控制。
12.5 细胞样本
对于培养基中生长的细胞或细胞系，主要控制细菌、真菌和病毒的污染。根据复苏后细胞
活力或细胞悬浮液的密度进行细胞样本的评估。
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12.6 微生物样本
微生物样本通过其表型特征和功能分析等进行质量控制。对于微生物样本分类学鉴定，通
过核酸序列分析或经典的生化试验等实现。将特定的微生物置于特定的培养基或特定的培养环
境中培养，防止杂菌污染。
12.7 生物分子样本
生物分子如核酸样本和蛋白质样本，通过凝胶电泳等检测DNA、RNA和蛋白质的完整性来进
行质量控制。
13 废弃样本的处理
13.1 基本要求
临床生物样本库存在生物安全风险的废弃物的处理和处置应符合国家或地方的法律和标准
的要求：
a）将操作、收集、运输、处理和处置废弃物的危险降至最小；
b）将其对环境的破坏降至最小；
c）只使用规定的或者被认可的技术和方法处理和处置废弃物；
d）废液排放应符合国家或地方的法律规定和标准；
e）应有废弃物处理和处置的程序和操作规程，具备处置危险废弃物的能力和资质；
f）应评估和避免废弃物处理和处置本身的风险；
g）应根据废弃物的性质和危险性分类处理和处置。
13.2 处置要求
处置要求如下。
a）样本和所有危险废弃物都应装入适当的容器，锐器应置于锐器盒中。
b）所有尖锐废弃物应放入贴有生物危害标签的抗刺穿容器中，针头等尖锐废弃物不能重
复使用。
c）所有贮存化学废弃物的容器应能完全封闭且不易被损坏，根据内容物不同选择能耐受
不同贮存条件的容器。对于某些化学废弃物，不宜使用软木塞或橡胶塞。
d）标签上应提供废弃物信息，包括废弃物成分的通用名称、每种成分的大概百分比。不
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能使用缩写或商品名，不使用模糊的种类。
e）液体废弃物容器只允许装满70%～80%的总容量，以允许蒸汽膨胀，减少满载时溅出的
可能。废弃物的处理可使用高温高压灭菌或者加入化学消毒剂。宜避免处理时产生气溶胶或液
体溅出。
f）危险化学废弃物不能和一般垃圾混在一起处理。需要特殊处理的有机过氧化物，应与
其他废弃物分开处理。只含危险化学品的废弃物应交由专业处理机构处理。
g）所有含有生物样本的废弃物都被认为具有生物危险性，应用121℃、15min高压蒸汽灭
菌处理后，装入黄色医疗垃圾袋，交由医疗废弃物处理专业机构处理。
h）高压后废弃物应被贮存在集中存放废弃物的设施中。
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附录A
（资料性）
临床标本采集的标准工作程序
A.1 血液标本采集程序
A.1.1 定义
静脉或动脉穿刺血液标本（blood specimens）：从病人静脉或动脉穿刺获取的可提供的
用于生化检验或医学研究的血液标本。
添加剂（additive）：除采血管的管壁和管盖上的涂料外，以实现某种目的为目标，在血
标本采集过程中加入采血管中的有效化学成分。常用的添加剂成分有惰性分离胶和促凝剂、肝
素、枸橼酸钠及EDTA等。
A.1.2 血液采集步骤
血液采集步骤如下。
a）采血前准备：核对样本采集名单及受试者姓名，向受试者解释操作目的并取得配合，
在采血管上贴好与采集记录相对应的标签。
b）穿戴工作服、口罩、帽子，手消毒、戴无菌手套。
c）选择血管，常用肘窝静脉、肘正中静脉、前臂内侧静脉。
d）在穿刺部位肢体下放一次性垫巾、止血带。
e）用复合碘棉签消毒穿刺部位。
f）在静脉穿刺部位上方4cm～7cm处扎止血带，嘱受检者握紧拳头，使静脉充盈显露。
g）穿刺：摘掉静脉穿刺针上的保护套，以左手固定受试者前臂，右手拇指和食指持穿刺
针，沿静脉走向使针头和静脉呈30°，快速刺入皮肤。然后呈5°向前刺破静脉壁进入静脉腔，
见回血后将针端连接负压管，血液自动流入试管内。如需多管血样，将穿刺端拔出，刺入另一
做好标记的负压真空管即可。达到采血量后，松开压脉带，嘱受检者松拳，拔下刺塞端的采血
试管。用消毒干棉签压住穿刺孔，拔出针头，嘱受检者继续按压3min～5min，勿揉。
h）若一次采集血需要采集多项标本时，推荐采血顺序为：
1）血培养管；
2）无添加剂管；
3）凝血试验管；
4）有添加剂的管依次为：枸橼酸钠管、肝素管、EDTA管。
i）将收集到的血液分装至冻存管中，贴标签后放入-80℃冰箱入库保存。
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A.1.3 注意事项
注意事项如下：
a）提前一天的晚餐应避免饮酒、禁食高脂肪、高蛋白饮品，禁食咖啡、浓茶、高糖及可
乐类饮料，避免剧烈运动;
b）在平静状态抽血，避免情绪激动;
c）禁止从输液三通管采血;
d）应在输液结束30min以后再采血，避免从正在输液的肢体上采血。
A.2 痰标本采集程序
A.2.1 定义
即时痰：就诊时深呼吸后咳出的痰液；
晨痰：患者晨起后，立即用清水漱口后，咳出的第2口、第3口痰液；
夜间痰：送痰前一日，患者晚间咳出的痰液。
A.2.2 痰液采集步骤
痰液采集步骤如下。
a）留痰前准备：穿戴工作服、口罩、帽子，手套,向留痰者解释痰液留取目的及留取方法
并取得合作，在痰瓶上贴好与采集记录相对应的标签。
b）核对样本采集名单及受试者姓名，将痰瓶交与受试者。
c）留痰者到远离人群的开放空间，或通风良好的留痰室,以清水漱口。
d）留痰者深呼吸2次～3次，每次用力呼出。
e）留痰者从肺部深处咳出痰。
f）留痰者将打开盖的痰瓶靠近嘴边收集痰液。
g）留痰者拧紧管盖,交至运送人员。
h）运送人员检查容器盖是否拧紧，如边缘有痰液污染应以消毒巾擦拭消毒；核对样本信
息及时将痰容器及相关表单送至接收实验室。
i）实验员核对样本信息，及时在符合生物安全要求的条件下进行样本处理，将处理好的
痰液分装至冻存管中，贴标签后放入-80℃冰箱入库保存。
A.3 胸水标本采集程序
A.3.1 定义
胸水：又称胸腔积液。正常情况下，胸膜腔两层胸膜间内含浆液，约为每千克体重
0.1mL～0.2mL，通常无色、透明，起润滑胸膜作用，它的渗出和再吸收处于平衡状态。任何因
素造成其渗出增加和(或)再吸收减少，即出现胸膜腔内液体积聚，形成胸腔积液。
A.3.2 胸水采集步骤
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胸水采集步骤如下。
a）经X线摄胸片，B超或CT定位胸水量，定位进针点和进针深度。
b）向受试者解释操作目的及注意事项并取得配合。
c）穿戴工作服、口罩、帽子，手消毒、戴无菌手套。
d）穿刺点周围，以10cm～15cm为半径，圈状常规消毒、盖洞巾，用2%利多卡因自皮肤到
胸腔做逐层局部麻醉。
e）根据穿刺点及进针深度进针，抽出液体后，固定穿刺针，连接一次性无菌引流袋。
f）引流袋悬挂于患者身旁低位做持续性体位引流。
g）待胸水不再流出后，拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，用胶布固定。
h）将收集到的胸水分装至冻存管中，贴标签后放入-80℃冰箱入库保存。
A.3.3 注意事项
注意事项如下：
a)穿刺后，患者不能咳嗽，以免咳嗽中肺部收缩，引起穿刺针划伤肺部；
b)穿刺时患者如出现晕眩、恶心、心悸等症状时，立即停止操作，并作相应的处理。
A.4 脑脊液标本采集程序
A.4.1 定义
脑脊液：也称脑脊髓液，是充满在脑部内颅骨与大脑皮质之间的蛛网膜下腔的透明体液，
即位于脑膜的蛛网膜和软脑膜之间的透明液体。
A.4.2 脑脊液采集步骤
脑脊液采集步骤如下：
a）向受试者解释操作目的及注意事项并取得配合。
b）穿戴工作服、口罩、帽子，手消毒、戴无菌手套。
c）患者侧卧于硬板床上，背部与桌面垂直，头部尽量向前胸屈曲，两手抱膝紧贴腹部，
使躯干尽可能呈弓形；或由助手在术者对面用一手挽患者头部，另一手挽双下肢腘窝处并用力
抱紧，使脊柱尽量后凸以增宽椎间隙，便于进针。
d）确定穿刺点，通常以双侧髂棘最高点连线与后正中线的交汇点为穿刺点，此处相当于
第3～4腰椎棘突间隙，有时也可以在上一或下一腰椎间隙进行。
e）穿刺点周圈常规消毒、盖洞巾，用2%利多卡因自皮肤到椎间韧带做逐层局部麻醉。
f）术者用左手固定穿刺点皮肤，右手持穿刺针以垂直背部、针尖稍斜向头部的方向缓慢
刺入，成人进针深度约为4cm～6cm，儿童约2cm～4cm。当针头穿过韧带与硬脑膜时，有阻力突
然消失感。此时可将针芯慢慢抽出（以防脑脊液迅速流出，造成脑疝），可见脑脊液流出。
g ） 放液前先接上测压管测量压力。正常侧卧位脑脊液压力为70mmH2O ～ 180mmH2O
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（0.098kPa=10mmH2O）或40滴/min～50滴/min。
h）撤去测压管，收集脑脊液2mL～5mL，用无菌试管留标本。
i）术毕，将针芯插入后一起拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，用胶布固定。
j）去枕平卧4h～6h，以免引起术后低颅压头痛。
k）将收集到的脑脊液分装至冻存管中，贴标签后放入-80℃冰箱入库保存。
A.4.3 注意事项
注意事项如下。
a)严格掌握禁忌证，凡疑有颅内压力升高者应先做眼底检查，如有明显视乳头水肿或有脑
疝先兆者，禁忌穿刺。凡患者处于休克、衰竭或濒危状态以及局部皮肤有炎症、颅后窝有占位
性病变者均列为禁忌。
b)穿刺时患者如出现呼吸、脉搏、面色异常等症状时，立即停止操作，并作相应的处理。
c)鞘内给药时，应先放出等量脑脊液，然后再等量置换性药液注入。
A.5 支气管肺泡灌洗液标本采集程序
A.5.1 定义
支气管肺泡灌洗术（bronchoalveolar lavage,BAL）是应用纤维支气管镜进行支气管肺泡
灌洗，收集肺泡表面衬液进行病原体、炎症与免疫细胞、可溶性物质和组织病理检查的方法。
支气管肺泡灌洗液（bronchoalveolar lavage fluid, BALF）：通过支气管肺泡灌洗术获
得的液体。
A.5.2 支气管肺泡灌洗液采集步骤
支气管肺泡灌洗液采集步骤如下：
a）取支气管肺泡灌洗液前准备：核对样本采集名单及受试者姓名，向受试者解释操作目
的及留取方法并取得配合；
b） 操作者穿戴工作服、口罩、帽子，手消毒、戴无菌手套；
c） 受试者进行局部麻醉；
d） 将纤维支气管镜插入右肺中叶或左肺舌段的支气管，将其项端契入支气管分支口；
e） 经气管活检孔缓缓注入37℃灭菌生理盐水，每次30mL～50mL，总量100mL～250mL，不
应超过300mL；
f） 每次注液后以-13.3kpa～-19.95kpa负压吸出，要防止负压过大，过猛。
A.6 组织样本（如活检组织、手术组织等）采集程序
应经伦理委员会批准并获得患者知情同意后，可切取特定部分样本用作研究用途。在采集
手术样本时，应注意不能对病理诊断及治疗造成影响。诊断性病理检查后剩余的手术样本可被
采集。为保持样本新鲜，样本从手术科室到病理科或到临床生物样本库的运送过程中无需固定，
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将样本置于无菌容器中并将容器置于冰上（2℃～8℃）。除非研究有特殊要求，否则组织样本
一般直接放在有标签的、配有生物低温介质的无菌容器里并移交给临床生物样本库处理。监督
样本的采集或活检过程，样本的特征应记录并保存，使终端用户能够借此判断组织的有效性。
A.7 尿液采集程序
A.7.1 定义
尿(urine)：又称尿液或小便，是经由泌尿系统及尿路排出体外的液体排泄物。
A.7.2 尿液的采集步骤
尿液的采集步骤如下：
a)打开尿液采集容器（120mL尿液采集广口容器）；
b) 不得接触杯子或杯盖内侧；
c) 将第一段尿液排到厕所内；
d) 在容器中收集中间（中段）尿标本；
e) 拧紧容器上的盖子。
A.8 便标本采集程序
采集新鲜便标本收集于无菌容器中。
A.9 其他类型标本采集程序
如心包积液、腹水、拭子、骨髓等，依照卫生管理部门发布的标准文件进行采集。
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附录B
（资料性）
试剂耗材
试剂耗材如下：
a)无菌螺旋口耐低温血清冻存管；
b)吸管；
c)记号笔；
d)移液器；
e)吸头；
f)比重1.077±0.001的聚蔗糖-泛影葡胺(商品名为淋巴细胞分离液)；
g)10%胎牛血清RPMI1640；
h)0.2%台盼蓝染色液，用等渗的PBS配制；
i)一次性无菌尖底离心管（15mL）；
g)一次性无菌尖底离心管（50mL）；
k)一次性塑料吸管(3mL)；
l)一次性移液管(10mL)；
m)无菌吸管；
n)2.5mL自立式刻度冻存管；
o)无菌用品：手套、纱布、剪刀、镊子、刀柄、刀片等；
p)2英寸冷冻保存盒；
q)组织清洗液及组织保存液；
r)标本条形码标签；
s)冷冻记号笔；
t)核酸提取试剂盒；
u)二甲基亚砜（DMSO，分析纯）；
v)二硫苏糖醇（DTT）；
w)中性罗氏培养基；
x)油酸-白蛋白-右旋糖-过氧化氢酶（ oleic acid-albumin-dextrose-catalase，OADC)
添加剂；
y)7H9冻存液（含20%甘油）:称取4.75g7H9粉末，200mL甘油，蒸馏水补齐至900mL，121℃，
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15min高压灭菌，待温度降至50℃，加入100mL OADC，置于4℃冰箱冷藏保存待用；
z) 其他适宜试剂耗材。
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附录C
（资料性）
设备
设备如下：
a)高速低温离心机；
b)-80℃超低温冰箱；
c)细胞计数板；
d)显微镜；
e)水平式离心机；
f)生物安全柜；
g)样本转运箱；
h)高压灭菌器；
i)恒温培养箱；
g)-20℃冰箱；
k)恒温水浴锅；
l)倒置相差显微镜；
m)液氮罐；
n)梯度降温盒；
o)条码打印机；
p)其他适宜设备。
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附录D
（资料性）
临床常分离的非结核分枝杆菌菌种的培养条件
临床常分离的非结核分枝杆菌菌种的培养条件见表D.1。
表D.1 临床常分离的非结核分枝杆菌菌种的培养条件
分类细菌学名中文译名常用培养基最适生长温
度/℃
代期或其它特
殊情况需要描
述
慢生长分枝
杆菌
M.avium 鸟分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 2 周~4 周
M.intracellulare 胞内分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周~3 周
M.kansasii 堪萨斯分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周~3 周
M.gordonae 戈登分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 2 周~3 周
M.parascrofulaceum 副瘰疬分枝杆菌罗氏培养基37 3 周~4 周
M.szulgai 苏尔加分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周~2 周
M.xenopi 蟾分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3 周~4 周
M.scrofulaceum 瘰疬分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 2 周~3 周
M.simiae 猿分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 4 周
M. asiaticum 亚洲分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 2 周~4 周
M.haemophilum 嗜血分枝杆菌MH 30 4 周~6 周
M. farcinogenes 产鼻疽分枝杆菌7H9， 罗氏
培养基
37 ≥3 周
M. komossense 科莫斯分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
30 2 周
M.malmoense 玛尔摩分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3 周~5 周
M.gastri 胃分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 2 周~4 周
M.nonchromogenicu
m
不产色分枝杆菌7H9，7H10, 37 8d~10d
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罗氏培养基
M.triviale 次要分枝杆菌7H9，7H10 37 7d~10d
M. terrae 土分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 >2 周
M.genavense 日内瓦分枝杆菌7H9，7H10 37 3 周~6 周
M.lentiflavum 慢生黄分枝杆菌罗氏培养基37 3 周~4 周
M.triplex 三重分枝杆菌7H10 37 4 周~6 周
M. chimaera 奇美拉分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周~3 周
M.marinum 海分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
30 7d~10d
M.ulcerans 溃疡分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
30 4 周~6 周
快生长分枝
杆菌
M. flavescens 浅黄分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周
M. diernhoferi 迪氏分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 ≥1 周
M. paratuberculosis 副结核分枝杆菌#1507 37 <1 周
M. senegalense 塞内加尔分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3d~5d
M. agri 田野分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周
M. chubuense 楚布分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3d~4d
M. duvalii 杜氏分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周
M. gadium 加地斯分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3d~d 天
M. obuense 奥布分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 4d~5d
M. rhodesiae 罗德岛分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 4d~7d
M. tokaiense 东海分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3d
M. porcinum 猪分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 4d~5d
M. fallax 诡诈分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
30 3d~5d
M. austroafricanum 南非分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 7d~10d
M. pulveris 灰尘分枝杆菌7H9，罗氏
培养基
37 3d~5d
M. chitae 千田分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 1 周
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M. szulgai 苏加分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 4d~5d
M. boenickei 波氏分枝杆菌大豆肉汤/琼
脂
37 3d
M.houstonense 霍斯顿分枝杆菌脑心浸液肉
汤/琼脂
37 2d
M.arupense 棕色分枝杆菌7H9，7H10 37 1 周
M.abscessus 脓肿分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3d~5d
M.chelonae 龟分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 5d~7d
M. fortuitum 偶发分枝杆菌7H10,罗氏培
养基
37 3d
M.smegmatis 耻垢分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3d
M.phlei 草分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 4d~7d
M.themoresistibile 抗热分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 7d~10d
M.aurum 金色分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 >7d
M.gilvum 浅黄分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 5d~14d
M.massiliense 马赛分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 3d~5d
M.immunogenum 免疫分枝杆菌7H9，7H10 30 1 周
M.mucogenicum 产黏液分枝杆菌7H9，7H10,
罗氏培养基
37 7d~14d
M.septicum 败血症分枝杆菌7H10 37 3d
M.holsaticum 荷尔斯泰因分枝杆菌7H10 30 >7d
M.peregrinum 外来分枝杆菌7H9，7H10 30 5d~7d
注：M．为Mycobacterium 的缩写。
T/CHATA 040—2024
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参考文献
[1] Global Laboratory Initiative. GLI model TB diagnostic algorithms. Geneva: Global Laboratory
Initiative. 2017.
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detection. Geneva: World Health Organization; 2020. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO.
[3] WHO operational handbook on tuberculosis. Module 3: diagnosis - rapid diagnostics for tuberculosis
detection. Geneva: World Health Organization; 2020. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO.
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and Medium Income setting:2007.
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tuberculosis and rifampicin resistance in adults and children: 2013.
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treatment. Geneva: World Health Organization; 2020. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO.
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update. Geneva: World Health Organization; 2016.
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[10] 病原微生物实验室生物安全管理条例（国务院令第424号）
[11] 可感染人类的高致病性病原微生物菌（毒）种或样本运输管理规定（卫生部令第45号）
[12] 人间传染的病原微生物目录（国卫科教发[2023]24号）
[13] 《中华人民共和国行政许可法》（中华人民共和国主席令第29 号）
[14] 《中华人民共和国人类遗传资源管理条例》（中华人民共和国国务院令第717号）